更新時間:2024-05-21
外切-β-1,4-葡聚糖酶(CBH)試劑盒,微板法外切-β-1,4-葡聚糖酶又稱纖維二糖水解酶(CBH)(EC 3.2.1.91)存在于細菌、真菌和動物體內(nèi),是纖維素酶系的組份之一
外切-β-1,4-葡聚糖酶(CBH)試劑盒,微板法
外切-β-1,4-葡聚糖酶(CBH)試劑盒,微板法
本試劑盒僅供科研使用 1 外切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維二糖水解酶(CBH)試劑盒說明書 (貨號:WS4350W 微板法 96 樣) 一、產(chǎn)品簡介: 外切-β-1,4-葡聚糖酶又稱纖維二糖水解酶(CBH)(EC 3.2.1.91)存在于細菌、真菌和 動物體內(nèi),是纖維素酶系的組份之一,該酶作用于β-1,4-糖苷鍵,每次切下一個纖維二糖(還 原糖)分子,在堿性條件下,產(chǎn)生的還原糖能與3,5-二硝基水楊酸反應生成棕紅色物質(zhì), 該物質(zhì)在540nm下有吸收峰,即可得出外切-β-1,4-葡聚糖酶的酶活性大小。 二、試劑盒組分與配制: 試劑名稱 規(guī)格 保存要求 備注 提取液 液體 110mL×1 瓶 4℃保存 試劑一 液體 32mL×1 瓶 4℃保存 試劑二 粉劑×1 瓶 4℃保存 臨用前加 16mL 試劑一,充分混勻 呈分散狀態(tài),每次用前務必混勻。 試劑三 液體 30mL×1 瓶 4℃保存 標準品 粉體 mg×1 支 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑 三、所需的儀器和用品: 酶標儀、96 孔板、水浴鍋、離心機、可調(diào)式移液器、研缽、冰和蒸餾水。 四、外切-β-1,4-葡聚糖酶活性測定: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實 驗樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: ① 組織:稱取約 0.2g 組織(水分充足的樣本可取 1g),加入 1mL 經(jīng)預冷的 95%乙醇冰 浴勻漿,4℃放置 10min;12000rpm,4℃離心 5min;棄上清,留沉淀,向沉淀中加入 經(jīng)預冷的 80%乙醇混勻,4℃放置 10min;12000rpm,4℃離心 5min;棄上清,留沉淀。 再向沉淀中加入 1mL 經(jīng)預冷提取液,渦旋混勻,4℃放置 10min;12000rpm,4℃離心 10min;留上清,棄沉淀。上清液置冰上待測。 ② 細菌/培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清;取約 500 萬細菌或細 胞加入 1mL 提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 20%或 200W,超聲 3s,間 隔 10s,重復 30 次);12000rpm,4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液體積(mL)為 500:1 比例進行提取。 ③ 液體樣本:若是澄清液體,直接檢測,若液體樣本渾濁,需 4℃×12000rpm,離心 10min, 取上清液檢測。 2、上機檢測: ① 酶標儀預熱 30min 以上,調(diào)節(jié)波長至 540nm。 ② 所有試劑解凍至室溫(25℃),試劑二使用前務必混勻。 ③ 在 EP 管中依次加入: 試劑名稱(μL) 測定管 對照管 樣本 50 50 試劑一 150 試劑二 150 37℃孵育 60min 試劑三 150 150 混勻,95℃水浴 5min,取出后用自來水或冰水冷卻至室溫,本試劑盒僅供科研使用 2 取 200μL 澄清液體于 96 孔板中,在 540nm 處讀取吸光值 A,ΔA=A 測定管-A 對照管(每個樣本做一個對照管)。 【注】若ΔA 在零附近,可增加樣本取樣質(zhì)量 W 或增加樣本加樣體積 V1(如增至 80μL, 則試劑三相應減少),則改變后的 W 和 V1 需代入計算公式重新計算。 五、結果計算: 1、標準曲線方程為 y = 0.0132x - 0.0545;x 為標準品質(zhì)量(μg),y 為ΔA。 2、按照蛋白濃度計算 單位定義:每毫克組織蛋白每小時催化產(chǎn)生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg/h/mg prot)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷(Cpr×V1) ÷T =1515.2×(ΔA+0.0545) ÷Cpr 3、按樣本鮮重計算 單位定義:每克組織每小時催化產(chǎn)生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg/h/g 鮮重)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷(W×V1÷V) ÷T =1515.2×(ΔA+0.0545)÷W 4、按細菌/細胞密度計算 單位定義:每 1 萬個細菌或細胞每小時催化產(chǎn)生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg /h/104 cell)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷(500×V1÷V) ÷T =3×(ΔA+0.0545) 5、按液體體積計算 單位定義:每毫升液體每小時催化產(chǎn)生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg /min /mL)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷V1 ÷T =1515.2×(ΔA+0.0545) V---加入提取液體積,1 mL; V1---加入樣本體積,0.05 mL; T---反應時間,60 min=1 小時; W---樣本質(zhì)量,g; 500---細菌或細胞總數(shù),500 萬; Cpr---樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;建議使用本公司的 BCA 蛋白含量檢測試劑盒; 附:標準曲線制作過程: 1 制備標準品母液(2mg/mL):從標準品管中稱量取出 4mg 至一新 EP 管中,再加 2mL 蒸餾水混勻溶解即 2mg/mL 的葡萄糖(母液需在兩天內(nèi)用且-20℃保存)。 2 把母液用蒸餾水稀釋成六個濃度梯度的標準品:0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6, 2. mg/mL。也可 根據(jù)實際樣本來調(diào)整標準品濃度。 3 依據(jù)對照管的加樣表操作,根據(jù)結果即可制作標準曲線。