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    原果膠(PP)含量試劑盒,微板法

    更新時間:2024-06-19

    簡要描述:

    原果膠(PP)含量試劑盒,微板法
    果膠是構(gòu)成細胞初生壁和中膠層的主要成分,主要由原果膠、果膠酸甲酯和果膠酸等 形式廣泛分布于植物果實、根莖和葉中。

    原果膠(PP)含量試劑盒,微板法

    原果膠(PP)含量試劑盒,微板法

    本試劑盒僅供科研使用 1 原果膠含量試劑盒說明書 (貨號:WS3070W 微板法 96 樣) 一、產(chǎn)品簡介: 果膠是構(gòu)成細胞初生壁和中膠層的主要成分,主要由原果膠、果膠酸甲酯和果膠酸等 形式廣泛分布于植物果實、根莖和葉中。果膠和纖維素以及金屬離子等物質(zhì)相結(jié)合形成不 溶于水的原果膠,他的存在使果實顯得堅實、脆硬。 本試劑盒先提取得到原果膠,采用咔唑比色法測定原果膠含量。即原果膠在稀酸中水解 為可溶性果膠,并進一步轉(zhuǎn)化為半乳糖醛酸,在硫酸溶液中與咔唑進行縮合反應,生成紫 紅色物質(zhì),經(jīng)光譜掃描該物質(zhì)在 530nm 處有吸收峰,顏色深淺與果膠含量成正比, 進而得原果膠含量。 二、試劑盒組成和配制: 試劑名稱 規(guī)格 保存要求 備注 提取液 液體 120 mL×1 4℃保存 試劑一 液體 1.5mL×1 4℃保存 標準品 粉劑 mg×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑 三、所需的儀器和用品: 酶標儀、96 孔板、水浴鍋、可調(diào)式移液器、乙醇、濃硫酸、研缽。 四、原果膠含量檢測: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗 樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: 1 0.1g 組織(烘干且過篩后的粉末組織可取 0.01g),加 1.5mL 80%乙醇,研磨勻 漿,85℃水浴 10min(及時補充 80%乙醇至 1mL),取出流水冷卻后,8000rpm25離心 10min,棄上清,留沉淀, 2 向沉淀中加入 1mL 80%乙醇,混勻,85℃水浴 10min(及時補充 80%乙醇至 1mL), 取出流水冷卻后,8000rpm25℃離心 10min,棄上清,留沉淀。 ③ 再向沉淀中加入 1 mL 蒸餾水,混勻,50℃水浴 30min,流水冷卻至室溫,8000rpm25離心 10min,棄上清,留沉淀。 ④ 向沉淀中加入 1mL 提取液,混勻,95℃水浴 60min,流水冷卻至室溫,8000rpm25離心 10min,取上清液待測。 2、上機檢測: ① 酶標儀預熱 30min 以上,調(diào)節(jié)波長為 530nm② 可取兩個樣本做適當梯度的稀釋(如 4 倍,即 1 份上清液+3 份蒸餾水),確定 適合本次實驗的稀釋倍數(shù) D③ 在 EP 管中依次加入: 試劑名稱 µL測定管 空白管 (僅做一次) 樣本 70 蒸餾水 70 濃硫酸 420 420 可用封口膜纏緊,85℃水浴 15min 后, 流水冷卻至室溫。本試劑盒僅供科研使用 2 試劑一 14 14 混勻,室溫(25℃)暗處反應 30min(間隔 10min 混勻一次),立即取出 200µL 96 孔中,于 530nm 處讀取吸光值 AA=A 測定-A 空白。 【注】:1、濃硫酸必須是分析純級別,且不能長期開口放置,否則影響顯色結(jié)果。另外濃硫酸具有 強腐蝕性,操作時需特別注意,85℃加熱取出后冷卻再打開蓋子,以防液體飛濺燒傷。 2、顯色反應必須在暗處反應,否則顏色很快消失或者變淡,影響吸光值。 3、若 A 測定管值大于 1.8,可用蒸餾水稀釋樣本即待檢測上清液,則稀釋倍數(shù) D 需代入公 式計算;或若 A 值再零附近可增加樣本取樣質(zhì)量 W五、結(jié)果計算: 1、標準曲線方程:y = 1.8749x -0.0018x 為標準品濃度(mg/mL),y A2、原果膠含量(mg /g 重量)= [(ΔA +0.0018) ÷1.8749×V1]÷ (W×V1÷V)×D =0.53×(ΔA +0.0018)÷W×D W---樣本重量,gV---加入提取液體積,1mLV1---加入樣本體積,0.07mLD---稀釋倍數(shù)。 附:標準曲線制作過程: 1 制備標準品母液(0.5mg/mL):臨用前向標準品中加入 2mL 蒸餾水(現(xiàn)配現(xiàn)用)。 2 把母液用蒸餾水稀釋成六個濃度梯度的標準品:00.10.20.30.40.5. mg/mL也可根據(jù)實際樣本來調(diào)整標準品濃度。 3 依據(jù)測定管的加樣表操作,根據(jù)結(jié)果即可制作標準曲線。

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