海藻糖-6-磷酸酯酶(TPP)試劑盒

海藻糖-6-磷酸酯酶(TPP)試劑盒

海藻糖-6-磷酸酯酶(TPP)試劑盒

本試劑盒僅供科研使用 1 6-磷酸海藻糖酯酶（TPP）試劑盒說明書 （貨號：WS2850F 分光法 24 樣） 一、產品簡介： 6-磷酸海藻糖酯酶（trehalose-6-phosphatephophatase，TPP，EC3.1.3.12）是海藻糖合 成的關鍵酶之一，催化海藻糖-6磷酸生成海藻糖。 本試劑盒利用 6-磷酸海藻糖酯酶催化底物 6-磷酸海藻糖生成海藻糖，海藻糖在海藻 糖酶的作用下分解成葡萄糖，接著在葡萄糖氧化酶作用下與特異顯色劑反應生成有色物 質，通過檢測該有色物質在 520nm 處的值，即可得出的 6-磷酸海藻糖酯酶活性大小。 二、試劑盒組成和配制： 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 30mL×1 瓶 4℃保存 試劑一 液體 9mL×1 瓶 4℃保存 試劑二 粉劑 mg×1 支 -20℃保存 臨用前甩幾下使粉劑落入底部，再加入 1.1mL 蒸餾水溶解備用。用不完的試劑 分裝后-20℃保存，盡量不要反復凍融。 試劑三 液體 1mL ×1 支 -20℃保存 試劑四 粉劑 mg×1 支 -20℃保存 臨用前甩幾下使粉劑落入底部，再加入 2.2mL 蒸餾水溶解備用。 試劑五 液體 30mL×1 瓶 4℃保存 標準品 液體 1mL ×1 支 4℃保存 若重新做標曲，則用到該試劑。 三、所需的儀器和用品： 可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿（光徑 1cm）、臺式離心機、水浴鍋/恒溫培養箱/金 屬浴、可調式移液器、研缽、冰。 四、6-磷酸海藻糖酯酶（TPP）活性測定： 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定，了解樣品和熟悉實驗流程，避免樣本和試劑浪費！ 1、樣本制備： ① 組織樣本：稱取約 0.1g 組織樣本（水分足的樣本可取 0.5g），加入 1mL 提取液，冰 浴勻漿，12000rpm，4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。 【注】：若增加樣本量，可按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為 1：5~10 的比例進行提取。 ② 細菌/真菌樣本：收集細菌或真菌到離心管內，離心后棄上清；取 500 萬細菌或真菌 加 1mL 提取液；冰浴超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復 30 次），室溫晃動提取 30min， 8000rpm 室溫（25℃）離心 10min，取上清。 【注】：若增加樣本量，可按照提取液體積(mL) ：細菌或真菌數量（104個）為 1：500~1000 比例提取。 ③ 液體樣本：澄清的液體樣本，可直接檢測。若渾濁，離心后取上清檢測。 2、上機檢測： ① 可見分光光度計預熱 30min 以上，調節波長至 520nm，蒸餾水調零。 ② 所有試劑解凍至室溫（25℃），在 EP 管中依次加入： 試劑名稱（μL） 測定管 對照管 樣本 40 40 試劑一 120 160 試劑二 40 混勻，37℃孵育 30min 后，立即沸水浴或金屬本試劑盒僅供科研使用 2 浴 5min 拿出。冷卻至室溫后再繼續添加試劑。 試劑三 20 20 混勻，37℃孵育 15min。室溫下于 12000rpm 離 心 10min，上清液待檢測。 ③ 在 EP 管中依次加入： 試劑名稱（μL） 測定管 對照管 上步待測液 80 80 試劑四 40 40 試劑五 600 600 混勻，37℃避光孵育 20min，全部液體轉移至 1mL 玻 璃比色皿（光徑 1cm）中，520nm 下讀取吸光值 A， △A=A 測定-A 對照(每個樣本做一個自身對照)。 【注】1.若 A 測定大于 1.5，可對③步的上清液用蒸餾水稀釋，則稀釋倍數 D 代入公式計算。 2.若△A 差值在零附近，可增加②步中樣本的體積 V1（如增至 80μL，則試劑一相應減少）， 則改變后的 V1 需代入公式重新計算。 五、結果計算： 1、標準曲線方程為 y = 0.0547x - 0.0027；x 為標準品質量（μg），y 為△A。 2、按照蛋白濃度計算： 酶活定義：每毫克組織蛋白在每小時催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。 TPP(μg/h/mgprot)=[(ΔA+0.0027)÷0.0547×(0.22÷0.08)]÷(V1×Cpr)÷T =2513.7×(ΔA+0.0027) ÷Cpr 3、按樣本鮮重計算： 酶活定義：每克組織每小時催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。 TPP(μg/h/g 鮮重)=[(ΔA+0.0027)÷0.0547×(0.22÷0.08)]÷(W×V1÷V)÷T=2513.7×(ΔA+0.0027)÷W 4、按細菌或真菌密度計算： 酶活定義：每 1 萬個細菌或真菌每小時催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。 TPP(μg/h/104cell)=[(ΔA+0.0027)÷0.0547×(0.22÷0.08)]÷(500×V1÷V)÷T=5×(ΔA+0.0027) 5、按液體體積計算： 酶活定義：每毫升液體每小時催化產生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。 TPP(μg/h/mL)=[(ΔA+0.0027)÷0.0547×(0.22÷0.08)]÷V1÷T=2513.7×(ΔA+0.0027) V--提取液體積，1 mL；V1--樣本體積：0.04mL；W--樣本質量，g；T--反應時間，0.5 小時； 500--細菌或真菌數量，500 萬；0.22--第②歩反應的總體積；0.08--第③歩反應上清液體積； Cpr--樣本蛋白質濃度，mg/mL；建議使用本公司的 BCA 蛋白含量檢測試劑盒。 附：標準曲線制作過程： 1 制備標準品母液（1mg/mL）：從標準品管中稱量取出 2mg 至一新 EP 管中，再加 2mL 蒸餾水混勻 溶解即 1mg/mL 的葡萄糖（母液需在兩天內用且-20℃保存）。 2 把母液用蒸餾水稀釋成以下濃度：0, 0.04,0.08,0.12,0.16, 0.2mg/mL。 3 第③歩顯色反應階段檢測：40μL 標準品+10μL 試劑四+150μL 試劑五，37℃避光孵育 20min，520nm 下讀取吸光值 A。依據結果制作標準曲線。