離子結合型果膠(ISP)含量試劑盒

離子結合型果膠(ISP)含量試劑盒

本試劑盒僅供科研使用 1 離子結合型果膠(ISP)含量試劑盒說明書 （貨號：WS5070F 分光法 48 樣） 一、產(chǎn)品簡介： 果膠是構成細胞初生壁和中膠層的主要成分，主要由原果膠、果膠酸甲酯和果膠酸等 形式廣泛分布于植物果實、根莖和葉中。果膠間以 Ca2+、Mg2+、氫鍵、糖苷鍵、酯鍵等 方式與其他物質交聯(lián)，通過特異的提取方式可以提取得到離子結合型果膠（ISP）和共價 結合果膠（CSP）。 本試劑盒用帶有螯合劑的酸溶液特異提取離子結合型果膠（ISP），采用硫酸-咔唑比色 法測定果膠含量。果膠水解為半乳糖醛酸，在硫酸溶液中與咔唑進行縮合反應，生成紫紅 色物質，經(jīng)光譜掃描該物質在 530nm 處有吸收峰，顏色深淺與果膠含量成正比，進 而得離子結合型果膠含量。 二、測試盒組成和配制： 試劑名稱 規(guī)格 保存要求 備注 提取液 A 液體 60 mL×1 瓶 4℃保存 提取液 B 液體 60 mL×1 瓶 4℃保存 試劑一 液體 1.5mL×1 支 4℃保存 標準品 粉劑 mg×1 支 4℃保存 若重新做標曲，則用到該試劑 三、所需的儀器和用品： 可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿（光徑 1cm）、水浴鍋、可調式移液器、乙醇、濃 硫酸、研缽。 四、離子結合型果膠(ISP)含量測定： 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定，了解本批樣品情況，熟悉實驗流程，避免實驗 樣本和試劑浪費！ 1、樣本制備： ① 取 0.1g 組織（烘干且過篩后的粉末組織可取 0.02g），加 1.5mL 的 80%乙醇，研磨勻 漿，85℃水浴 10min，取出流水冷卻后，8000rpm，25℃10min，棄上清，留沉淀（盡 量保留沉淀）。 ② 向沉淀中加入 1mL 的 80%乙醇震蕩混勻 2min，85℃水浴 10min，取出流水冷卻后， 8000rpm，25℃10min，棄上清，留沉淀（盡量保留沉淀）。 ③ 加入 1mL 的提取液 A，90℃水浴 15min（間隔 3min 晃動一次），8000rpm，室溫（25℃） 離心 10min，棄上清，留沉淀，向沉淀中加入 1mL 丙酮振蕩混勻，8000rpm，室溫 （25℃）離心 10min，棄上清，留沉淀，（注:若色素仍很多，繼續(xù)用丙酮提取 1-2 次）， 打開 EP 管置于 90℃孵育 20min，使沉淀干燥。 ④ 向沉淀中加入 1mL 提取液 B，室溫（25℃）震蕩提取 1 小時后，8000rpm，25℃離 心 10min，上清液待測。 2、上機檢測： ① 分光光度計預熱 30min 以上，調節(jié)波長為 530nm，蒸餾水調零。 ② 可取兩個樣本做適當梯度的稀釋（如 4 倍，即 1 份上清液+3 份蒸餾水），確定 適合本次實驗的稀釋倍數(shù) D。 ③ 在 EP 管中依次加入：本試劑盒僅供科研使用 2 試劑名稱 （µL） 測定管 空白管 （僅做一次） 樣本 105 蒸餾水 105 濃硫酸 630 630 可用封口膜纏緊，85℃水浴 15min 后， 流水冷卻至室溫。 試劑一 21 21 混勻，室溫（25℃）暗處反應 30min（間隔 10min 混勻一次），全部液體轉移至 1mL 玻璃比色皿中， 于 530nm 處讀取吸光值 A，△A=A 測定-A 空白。 【注】：1、濃硫酸必須是分析純級別，且不能長期開口放置，否則影響顯色結果。另外濃硫酸具有 強腐蝕性，操作時需特別注意，85℃加熱取出后冷卻再打開蓋子，以防液體飛濺燒傷。 2、顯色反應必須在暗處反應，否則顏色很快消失或者變淡，影響吸光值。 3、若 A 測定管值大于 1.8，可用蒸餾水稀釋樣本即待檢測上清液，則稀釋倍數(shù) D 需代入公 式計算；或若 A 值再零附近可增加樣本取樣質量 W。 五、結果計算： 1、標準曲線方程：y = 2.6619x-0.0141；，x 為標準品濃度（mg/mL），y 是△A。 2、離子結合型果膠(mg /g 重量) =[(ΔA+0.0141) ÷2.6619×V1]÷ (W×V1÷V)×D =0.37×(ΔA+0.0141)÷W W---樣本重量，g； V---加入提取液體積，1mL； V1---加入樣本體積，0.105mL； D---稀釋倍數(shù)。 附：標準曲線制作過程： 1 制備標準品母液（0.5mg/mL）：臨用前向標準品中加入 2mL 蒸餾水（現(xiàn)配現(xiàn)用）。 2 把母液用蒸餾水稀釋成六個濃度梯度的標準品：0，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5. mg/mL。 也可根據(jù)實際樣本來調整標準品濃度。 3 依據(jù)測定管的加樣表操作，根據(jù)結果即可制作標準曲線。