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    3-磷酸甘油酯酶(GPP)活性試劑盒

    更新時間:2024-05-27

    簡要描述:

    3-磷酸甘油酯酶(GPP)活性試劑盒
    3-磷酸甘油酯酶(GPP,EC3.1.3.21)催化 3-磷酸甘油脫下磷酸根離子形成甘油,是甘油合成過程中的最后一步酶促反應,該酶活性的高低直接決定甘油的生成水平。

    3-磷酸甘油酯酶(GPP)活性試劑盒

    3-磷酸甘油酯酶(GPP)活性試劑盒

    本試劑盒僅供科研使用 1 3-磷酸甘油酯酶(GPP)活性測定試劑盒說明書 (貨號:WS8190F 分光法 24 樣) 一、產品簡介: 3-磷酸甘油酯酶(GPP,EC3.1.3.21)催化 3-磷酸甘油脫下磷酸根離子形成甘油,是甘 油合成過程中的最后一步酶促反應,該酶活性的高低直接決定甘油的生成水平。 本試劑盒采用 3-磷酸甘油為底物,用鉬酸銨顯色劑測定單位時間內酶催化產生的磷酸 根離子的量,進而得出 3-磷酸甘油酯酶的活性大小。 二、試劑盒組成和配制: 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 35mL×1 4℃保存 試劑一 粉劑 mg×1 -20℃保存 用前甩幾下或離心使粉劑落入底 部,臨用前加 3.6mL 蒸餾水溶解 備用。用不完的試劑 4℃保存。 試劑二 液體 3mL×1 4℃保存 試劑三 A:粉體 mg×1 B:液體 3mL×1 4℃保存 臨用前在試劑 A 中加 2.7mL B 液,再加 34.8mL 的蒸餾水,混 勻溶解備用。用不完的試劑 4℃ 保存,若試劑變色則舍棄。 標準品 粉體 mg×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑 【注】:全程操作需無磷環境;試劑配置用新的槍頭和玻璃移液器等,也可以用一次性塑料器皿, 免磷污染。 三、所需的儀器和用品: 分光光度計、1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)、可調試移液器、臺式離心機、水浴鍋、 研缽、冰。 四、α-磷酸甘油酯酶(GPP)活性測定: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗 樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: ① 組織樣本: 取約 0.1g 組織(水分充足的樣本可取 0.5g)到研缽內,加入 1mL 提取液,在冰上進 行冰浴勻漿或者液氮研磨。12000rpm,4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 []:也可以按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10 的比例提取。 ② 細菌/真菌樣本: 先收集細菌/真菌到離心管內,離心后棄上清;取 500 萬細菌/真菌加入 1mL 提取液; 冰浴超聲波破碎細菌/真菌(冰浴,功率 20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次); 12000rpm, 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 []:也可按照細菌或細胞數量(104個):提取液體積(mL)為 500~10001 的比例進行提取) ③ 液體樣本:澄清的液體樣本直接檢測,若渾濁則離心后取上清液檢測。 2、上機檢測① 可見分光光度計預熱 30min 以上,調節波長至 700nm,蒸餾水調零。 ② 在 EP 管中依次加入下列試劑:本試劑盒僅供科研使用 2 ③ 顯色反應,在 EP 管中加入: 五、結果計算: 1、標準曲線方程:y = 0.6624x - 0.003,x 是標準品摩爾質量(μmol/mL, y 是△A。 2、按蛋白濃度計算: 定義:每小時每毫克組織蛋白分解底物產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 GPP(μmol/h/mg prot)= [(A+0.003)÷0.6624×V2] ÷V1×Cpr÷T=12.08×(A+0.003)÷Cpr 3、按樣本鮮重計算: 定義:每小時每克組織分解底物產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 GPP(μmol/h/g 鮮重)= [(A+0.003)÷0.6624×V2]÷(W× V1÷V)÷T=12.08×(A+0.003)÷W 4、按細菌或細胞密度計算: 定義:每小時每 1 萬個細菌或細胞分解底物產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 GPP(μmol/h /104 cell)= [(A+0.003)÷0.6624×V2]÷(500×V1÷V)÷T=0.024×(A+0.003) 5、按液體體積計算: 定義:每小時每毫升液體分解底物產生 1μmol 無機磷的量為一個酶活力單位。 GPP(μmol/h/mL)=[(A+0.003)÷0.6624×V2]÷V1÷T=12.08×(A+0.003) V---加入提取液體積,1mL; V1---加入樣本體積,0.06mL ; V2---酶促反應總體積,0.24mL; T---反應時間,1/2 小時; W---樣本鮮重,g500---細菌或細胞總數,500 萬。 Cpr---樣本蛋白質濃度,mg/mL;建議使用本公司的 BCA 蛋白含量檢測試劑盒。 附:標準曲線制作過程: 1. 制備標準品母液(5μmol/mL):標準品用 10mL 試劑一溶解。(母液需在兩天內用)。 2. 把母液稀釋成六個濃度:0, 0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1. μmol/mL。也可根據實際樣本來調整標準品濃度。 3. 依據顯色反應階段測定管的加樣體系操作,根據結果即可制作標準曲線。 試劑名稱(μL測定管 對照管 樣本 60 提取液 60 60 試劑一 60 60 混勻,37℃孵育 30min。 試劑二 60 60 樣本 60 混勻,12000rpm4℃離心 5min,取上清待測。 上清液 150 150 試劑三 600 600 混勻,室溫靜置 3min,全部液體轉移至 1mL 玻璃比色皿 (光徑 1cm),700nm 下讀取各管吸光值 AA=A 測定-A 對照(每個樣本做一個自身對照)。

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