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    磷脂酶D(PLD)試劑盒

    更新時間:2024-05-27

    簡要描述:

    磷脂酶D(PLD)試劑盒
    磷脂酶 D(EC 3.1.4.4)即磷脂酰*堿水解酶,是催化磷酸二酯鍵水解和堿基交換反應的一類酶的總稱,廣泛存在于高等動植物和細菌等多種生物體中,具有參與細胞脂質代謝、信號傳導、生物膜形成的抗逆境脅迫等生理功能。

    磷脂酶D(PLD)試劑盒

    磷脂酶D(PLD)試劑盒

    本試劑盒僅供科研使用 1 磷脂酶 DPhospholipases D,PLD)活性測定試劑盒說明書 (貨號:WS5290F 分光法 24 樣) 一、產品簡介: 磷脂酶 DEC 3.1.4.4)即磷脂酰*堿水解酶,是催化磷酸二酯鍵水解和堿基交換反應的 一類酶的總稱,廣泛存在于高等動植物和細菌等多種生物體中,具有參與細胞脂質代謝、 信號傳導、生物膜形成的抗逆境脅迫等生理功能。 磷脂酶 D 催化水解底物 O-(4-硝基苯基)*堿(NPPC),并在外加酸性磷酸酶的作用下產 生對硝基*酚(PNP),該產物在 405nm 處有吸收峰。通過檢測 PNP 405nm 下的增加 速率,即可得到 PLC 酶活性大小。 二、試劑盒的組成和配制: 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 30mL×1 4℃保存 用前搖勻再用。 試劑一 粉劑 mg×2 -20℃保存 用前甩幾下或離心使粉劑落入底 部,每支加 0.3mL 蒸餾水溶解備 用。用不完的試劑-20℃保存。 試劑二 粉劑 mg×1 -20℃保存 用前甩幾下使粉劑落入底部,加 1.2mL 蒸餾水溶解且 5000rpm 5min,取上清液備用。用不完 的上清液-20℃保存。 試劑三 液體 30mL×1 4℃保存 試劑四 液體 4mL×1 4℃保存 標準品 粉劑×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑。 三、所需的儀器和用品: 可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)、低溫離心機、水浴鍋或恒溫培養箱、 可調式移液器和蒸餾水。 四、磷脂酶 DPLD)活性測定: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實 驗樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: ① 組織樣本:取約 0.1g 組織(水分充足的果實樣本可取 0.2-0.3g),加入 1mL 提取液(用 前搖勻再用),進行冰浴勻漿,13000rpm,4℃離心 15min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10 的比例提取。 ② 細菌/細胞樣本:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;取約 500 萬細菌或細 胞加入 1mL 提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 200W,超聲 3s,間隔 10s, 重復 30 次);13000rpm 4℃離心 15min,取上清,置冰上待測。 【注】:若增加樣本量,可按照細菌/細胞數量(104):提取液(mL)為 500~10001 的比例進行提取。 2、上機檢測: ① 可見分光光度計預熱 30min,調節波長到 405nm,蒸餾水調零。 ② 所有試劑解凍至室溫(25℃),在 EP 管中依次加入: 試劑名稱(μL測定管 對照管 樣本 105 105 試劑一 20 試劑二 20 20本試劑盒僅供科研使用 2 試劑三 485 505 混勻,37℃孵育反應 30min。 試劑四 70 70 混勻,取全部液體至 1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)中, 405nm 處讀吸光值 A,A=A 測定-A 對照(每個樣本 需做一個自身對照)【注】:A 的值小于 0.01,可增加樣本量 V1(如增至 60μL,則試劑三相應減少)或延長反應時 T(如增至 60min 或更長),則改變后的 V1 T 須代入公式重新計算。 A 的值超過 1,可減少樣本量 V1(如減至 10μL,則試劑三相應增加)或縮短反應時間 T(如減至 10min);或對最終的待檢液用蒸餾水稀釋,則改變后的 V1 T 和稀釋倍數 D 代入計算公式; 五、結果計算: 1、標準曲線:y = 0.0233x - 0.0109,x PNP 摩爾質量(nmol)y 是△A。 2、按照樣本蛋白濃度計算: 酶活定義:37℃中每毫克蛋白每分鐘水解 1nmol NPPC 產生 PNP 定義為 1 個酶活單位。 PLD (nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0109)÷0.0233]÷(Cpr×V1)÷T×D=13.6×(ΔA+0.0109)÷Cpr×D 3、按照樣本質量計算: 酶活定義:37℃中每克組織每分鐘水解 1nmol NPPC 產生 PNP 定義為 1 個酶活單位。 PLD (nmol/min/g 鮮重)=[(ΔA+0.0109)÷0.0233]÷(W×V1÷V)÷T×D =13.6×(ΔA+0.0109)÷W×D 4、按細菌/細胞數量計算: 酶活定義:每 104個細胞每分鐘水解 1nmol NPPC 產生 PNP 定義為 1 個酶活單位。 PLD (nmol/min/104 cell)=[(ΔA+0.0109)÷0.0233]÷(500×V1÷V)÷T×D=0.03×(ΔA+0.0109)×D 5、按液體體積計算: 酶活定義:37℃中每毫升液體每分鐘水解 1nmol NPPC 產生 PNP 定義為 1 個酶活單位。 PLD (nmol/min/mL)=[(ΔA+0.0109)÷0.0233]÷V1÷T×D=13.6×(ΔA+0.0109)×D V---提取液體積,1 mL; V1---加入反應體系中上清液體積(mL),0.105mL; T---反應時間(min),30 min; D---稀釋倍數,未稀釋即為 1; W ---樣品質量,g; 500---細胞數量; Cpr---粗酶液蛋白質濃度(mg/mL),建議使用本公司的 BCA 蛋白質含量測定試劑盒; 附:標準曲線制作過程: 1 制備標準品母液(10μmol/mL):向標準品 EP 管里面加入 1.4ml 蒸餾水超聲溶解。 2 把母液用蒸餾水稀釋成以下濃度梯度的標準品:0, 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5 μmol/mL。也 可根據實際樣本來調整標準品濃度。 3 EP 管中依次加入:105μL 標準品+525μL 試劑三+70μL 試劑四,混勻取全部液體 1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)中,于 405nm 處讀值,根據結果即可制作標準曲線。

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